前言
高血壓是體循環(huán)動脈壓增高的一種常見心血管疾病，由基因和環(huán)境多因素相互作用引起，是全球范圍內(nèi)的重大公共衛(wèi)生問題，可分為原發(fā)性高血壓和繼發(fā)性高血壓兩大類。高血壓可引起身體多器官損害，以心、腦、腎為主。由于高血壓發(fā)病因素復(fù)雜，又是多種疾病的危險因素，因此需要不同動物模型區(qū)分不同遺傳和環(huán)境因素，用于研究高血壓病的發(fā)病機制以及和其他疾病的關(guān)系，找到預(yù)防和治療的方法。
高血壓動物模型按照造模方式可以分為遺傳性模型和非遺傳性模型遺傳性模型有的是通過近交系繁殖和表型篩選，建立天然突變的品系，多是大鼠模型。另一方面可以利用基因工程技術(shù)，通過基因修飾獲得高血壓模型。由于小鼠的轉(zhuǎn)基因和基因敲除技術(shù)的成熟，這類模型以小鼠模型為主。非遺傳性模型可以通過腎血管手術(shù)或激素、飲食、藥物、應(yīng)激等誘導(dǎo)方式制備。而遺傳性模型和非遺傳性模型的相互結(jié)合，更可以研究基因和環(huán)境因素的相互影響。進一步結(jié)合其他相關(guān)疾病或 駢官損害模型，例如高脂血癥模型、胰島素抵抗模型、肥胖模型等，為高血壓和其他疾病相互關(guān)系的研究以及相關(guān)治療方法的、研究提供很好的研究對象?？傊?，目前研究高血壓采用多因素的動物模型較多，動物種類以小鼠、大鼠模型為主。隨著大鼠的基因敲除和轉(zhuǎn)基因技術(shù)的逐步建立起來，其在高血壓模型中應(yīng)用的增加將逐步地替代小鼠。
部分造模方法
使用動物：大鼠
【造模機制】：
自發(fā)性高血壓大鼠(spontaneously hypertensive rat,SHR)是1963年Okamoto和Aoki培育而成的近交系Wistar大鼠及其對照系近交系Wistar-Kyolo大鼠。SHR大鼠高血壓的發(fā)病和心輸出量增加有關(guān)。隨高血壓進展，心輸出量恢復(fù)正常，而總外周阻力增加。長期可引起心肌肥大和充血性心功能衰竭。
易卒中性自發(fā)性高血壓大鼠(stroke prone spontaneously hypertensive rat,SHRsp)是Yamori等從自然死于腦卒中的SHR大鼠后代中近交培育而成。SHR和其陰性對照雜交的第一代小仔，被稱為臨界性高血壓大鼠(borderline hypertensive rat，BHR)，是一類對高血壓相關(guān)的環(huán)境因素十分敏感的模型。鹽敏感性大鼠(Dahl salt-sensitive rat,DS)也是一類近交系篩選模型。此外一些肥胖模型也被認(rèn)為是自發(fā)性高血壓模型。
【模型特點】：
SHR(4~6周齡）在無任何物理藥物、手術(shù)等因素下，自發(fā)高血壓，但是環(huán)境因素影響高血壓的程度。該模型對溫度、聲、光等飼養(yǎng)環(huán)境要求嚴(yán)格。SHR收縮壓通常在160mmHg (21.33kPa)以上，13周左右，心肌細(xì)胞肥大，24周后左心室壁肥厚進行性加重，心肌膠原含量明顯增加，以后因日益加重的心肌纖維化和心肌間質(zhì)重構(gòu)而引起心臟舒縮功能障礙。SHRsp模型6周血壓開始升高，5～6月齡達高峰(230~250mmHg)。雄性平均壽命9個月，雌性12個月，80％雄性，60%雌性發(fā)生腦卒中。
【模型來源】：
SHR現(xiàn)在常用的是由Okamoto等培育的京都種，其他還有多種來源的SHR大鼠。我國上海高血壓研究所動物實驗中心等單位可提供SHR。
【模型評估和應(yīng)用】：
SHR大鼠在發(fā)病原因上與人類高血壓有一定差距，但從許多方面來講，如發(fā)病機制、高血壓心血管并發(fā)癥、外周血管阻力變化、對鹽的敏感性等都與人類高血壓患者相似，是目前國際公認(rèn)最接近于人類原發(fā)性高血壓的動物模型，可用于高血壓及并發(fā)癥發(fā)病機制研究，是降壓藥物篩選或藥效評價的理想實驗動物模型。
SHPsp模型是國際高血壓協(xié)會高血壓大鼠命名委員會(1986年8月第11屆國際高血壓會議）推薦的高血壓實驗?zāi)Ｐ停俏ㄒ粚嶒炑芯款A(yù)防高血壓引起腦血管病變的動物模型，是和人類腦卒中最接近的動物模型，應(yīng)用最廣。
參考文獻：
1.鐘航海，馮英凱．慢性復(fù)合應(yīng)激誘發(fā)高血壓動物模型的制備．現(xiàn)代醫(yī)藥衛(wèi)生，2010, 26 (23):3523-3525
2.DiBona GF. Sympathetic nervous system and hypertension. Hypertension,2013, 61 (3):556-560
3.Domas WC.Silva ME. An.imal models for tl1e study of arterial hypertension. J Biosci,2011, 36 (4):731-737
4.Drenjancevic-Peric 1, Jelakovic B, Lombard J H, et al. High-salt diet and hypertension: focus on the renin angiolensin system. Kirlney Blood Press Res,201L,34(1): 1-11
5.Harrison M, Maresso K, Broeckel U. Genetic detenn.inants of hype.rlens.ion:an update. Curr Hyperlens Rep, 2008, 10 (6):488-495
6.Lerman LO,Chade AR,Sica V.el al. Animal models of hypertension:an ove.rview. J Lab Clin Med,2005, 146(3): 160-173
7.Li J, LaMarca B,Reckelhoff JF. A model of preeclampsia in rats: the reduced uterine pe.rfusion pressure (RUPP) model. Am J Physiol Heart Circ Physiol,2012,303(1): Hl-8
8.Madero M,Perez-Pozo SE,Jalal D,et al. Dietary fructoseand hypertension. Curr Hyperteos Rep,2011,13(l):29-35
9.O'Toole TE, Conklin DJ, Bhatnagar A. Environmental risk factors for heart disease. Rev Environ Health, 2008, 23(3): 167-202
10.Queisser N,Schupp N. Aldosterooe,oxidative stress,and NF-kB activation i.n hypertension-related cardiovascular and renal diseases. Free Radie Biol Med,2012,53(2):314-327
11.Torok J. Participation of nitric oxide in different models of experimental hypertension. Physiol Res, 2008, 57 (6): 813-825
號二維碼.jpg)
